Öz
Amaç:
Bu deneysel çalışmanın amacı, yoğun bakım hastalarında sıklıkla kullanılan L-alanin + L-glutaminin, karaciğer, ince bağırsaktaki yapısal değişikliklere, yara iyileşmesine ve bakteriyel translokasyona etkilerinin araştırılmasıdır.
Sonuç:
Deneysel rat yanık modelinde yapılan bu çalışmanın sonucunda elde ettiğimiz verilere göre, L-glutamin + L-alanin kullanımının, yanık hastalarının yara iyileşmesine olumlu etkisi olduğu, ek olarak da bakteriyel translokasyonu engellemeye yardımcı olduğu kanısına vardık.
Bulgular:
İki grup arasında ince bağırsak biyopsileri arasında hiçbir yapısal fark görülmedi. Karaciğer biyopsilerinde kontrol grubunda grade 1 hasarlanma mevcutken deney grubunda hasar tespit edilemedi. Yanık yarasından alınan deri biyopsilerinin patolojik incelemesinde deney grubunda epitelizasyon ve granulasyonun daha iyi olduğu tespit edildi. Mikrobiyolojik incelemede kontrol grubundaki iki ratın ince bağırsak ve kan kültürlerinde S. aureus, iki ratın ince bağırsak ve kan kültürlerinde de S.epidermidis olmak üzere toplamda dört ratta üreme tespit edildi. Deney grubundaki hiçbir ratın ince bağırsak ve kan kültürlerinde üreme olmadı.
Yöntem:
Bu çalışmada 190-230 gr olan 20 adet erkek Sprague Dawley rat kullanıldı. Deney, 2 grup üzerinde tasarlandı. Tüm ratlarda, deneysel rat yanık modeline uygun olarak yanık oluşturuldu ve her iki grup eşit şartlarda 21 gün beslendi. Deney grubuna, 5 mL/kg/gün L-glutamin + L-alanin içeren (Dipeptiven®, Fresenius Kabi BadHamborg, Almanya) preparat oral yolla verildi. Yirmi bir günün sonunda tüm ratlar sakrifiye edildi. Tüm ratlardan steril şartlarda, karaciğer, ince bağırsak, yanık yarasından biyopsiler ve kan kültürleri alındı. Patolojik incelemede karaciğer ve ince bağırsak dokularındaki yapısal değişiklikler ve yara iyileşmesi değerlendirildi. Mikrobiyolojik incelemede ince bağırsak ve kan kültürleri kıyaslanarak L- glutamin + L-alaninin bakteriyel translokasyona etkisi araştırıldı.
Anahtar Kelimeler: Bakteriyal translokasyon, L-alanin, L- glutamin, yanık
Kaynakça
Montejo JC, Zarazaga A, Lopez-Martinez J, Blesa AL, Celaya S, Conejero R, et al. Immunonutrition in critically ill patients. JPEN J Parenter Enteral Nutr 2004;28(3):192-193.
Guo GH, Xu C, Bai XJ, Zhan JH, Zhang HY, Zhang ZA, et al. Effects of arginine enriched enteral nutrition on nutritional status and cellular immunity in burn patients. Zhonghua Shao Shang Za Zhi 2009;25(3):211-214.
Yan H, Peng X, Huang Y, Zhao M, Li F, Wang P. Effects of early enteral arginine supplementation on resuscitation of severe burn patients. Burns 2007;33(2):179-184.
Peng X, Wang SL. Glutamine and immunonutrition for burn patients. Zhonghua Shao Shang Za Zhi 2009;25(5):321-324.
Sengezer M, Selmanpakoğlu N, Duman H, Çetin C. Epidemiological analysis of burn injuries in Gülhane Military Medical Academy Burn Center. Türk Plast Cer Derg 1995;3(2):74-77.
Pruit BA, Mason AD. Epidemiological demographic and outcome characteristics of burn injury. In Total burn care, Herndon DN (editor). London: W.B. Saunders, 1996:5-15.
Rong XZ, Zhang T, Yang RH, Huang XH, Li QH. Morphological changes in intestinal villi after severe burns in rats. Zhonghua Shao Shang Za Zhi 2005;21(6):459-461.
Chen DC, Ma LQ, Liu SZ. Effects of rhubarb on intestinal flora and bacterial translocation in rats with sepsis. Zhongguo Wei Zhong Bing Ji Jiu Yi Xue 2009;21(1):17-20.
Wen ZL, Zhang LD, Liu SZ, Liu J, Chen YZ, Chen DC. Effect of broad-spectrum antibiotics on bacterial translocation in burned or septic rats. Chin Med J (Engl) 2019;132(10):1179-1187.
Akin ML, Gulluoglu BM, Erenoglu C, Dundar K, Terzi K, Erdemoglu A, et al. Hyperbaric Oxygen Prevents Bacterial Translocation in Thermally Injured Rats. J Invest Surg 2002;15(6):303-310.
Himuro H. The Effect of Ozone on Colonic Epithelial Cells. Kurume Med J 2018;64(4):75-81.
Jiang J, Ren Z, Chen L, Jiang L, Xie HY, Zhou L, et al. Enteral supplementation with glycyl-glutamine improves intestinal barrier function after liver transplantation in rats. Hepatobiliary Pancreat Dis Int 2011;10(4):380-385.
Kesici S, Türkmen A, Kesici U, Altan A, Polat E. Effects of enteral and/or parenteral glutamine on intestinal mucosa and on intesti- nal levels of blood glutamine, TNF-α, IL-10 in the experimental sepsis model. Intensive Care Med 2010;36(Suppl 2):372.
Gudaviciene D, Rimdeika R, Adamonis K. Nutrition of burned patients. Medicina (Kaunas) 2004;40(1):1-8.
Grau Carmona T, Rincón Ferrari MD, García Labajo D. [Nutritional support in burnt patients]. Nutr Hosp 2005;20(Suppl 2):44-46.
Kagan RJ. Metabolism and nutrition in the burned patient. Nutr Clin Pract 1991;6(1):1-2.
Dickerson RN, Gervasio JM, Riley ML, Murrell JE, Hickerson WL, Kudsk KA, et al. Accuracy of predictive methods to estimate resting energy expenditure of thermally-injured patients. JPEN J Parenter Enteral Nutr 2002;26(1):17-29.
De Luis D, Aller R, Culebras J. Recommendations for artificial nutritional support in critically ill patients. Med Clin (Barc) 2006;127(6):232-236.
Soeters PB, Grecu I. Have we enough glutamine and how does it work? A clinician’s view. Ann Nutr Metab 2012;60(1):17-26.
Burns DL, Gill BM. Reversal of parenteral nutrition-associated liver disease with a fish oil-based lipid emulsion (Omegaven) in an adult dependent on home parenteral nutrition. JPEN J Parenter Enteral Nutr 2013;37(2):274-280.
Piattoly T, Welsch M. “L-Glutamine Supplementation: Effects on Recovery from Exercise.” Medicine and Science in Sports and Exercise 36 (2004): n. pag.
Donmez R, Oren D, Ozturk G, Kisaoglu A, Ozogul B, Atamanalp SS. The combined effects of glutamine and growth hormone on intestinal anastomosis in the rat intra-abdominal sepsis model. J Surg Res 2013;182(1):142-145.
Quirino IE, Correia MI, Cardoso VN. The impact of arginine on bacterial translocation in an intestinal obstruction model in rats. Clin Nutr 2007;26(3):335-340.
